Officiële naam:

Synoniemen:

Trypoxylon attenuatum ^{[Soortenregister]}

zie meer op: www.gbif.org

Etymologie:

attenuatum

Latijn: lang taps toelopend

INHOUD

1. Verspreiding
2. Gedrag
3. Plant relaties
4. Prooi relaties
5. Parasitaire relaties
6. Herkenning

1. VERSPREIDING

Trypoxylon attenuatum is een vrij algemene wesp ^{[Waarneming.nl]} die verspreid door heel Nederland voorkomt met een piek in Zuid-Limburg ^{[Peeters et al. 2004]}.

2. GEDRAG

2.1. ACTIVITEIT

De soort is actief van begin april mei tot half oktober ^{[Peeters et al. 2004]}.

Twee generaties per jaar zijn mogelijk ^{[Blösch 2000],[Abraham 1982]}^{,[Danks 1971]}.

De dagelijkse activiteiten van de soort beginnen vanaf 9 uur ’s ochtends ^{[Abraham 1982]} met de piek activiteit in de namiddag ^{[Abraham 1982]}. De laagste temperatuur waarbij de soort actief is is +20° ^{[Abraham 1982]}.

2.2. ONTWIKKELING

Nest

De vrouwtjes van deze hypergeïsche soort knagen hun nestgangen in het merg van natuurlijke buisvormen zoals plantenstengels en rieten daken en Lipara (DIPTERA) gallen in riet ^{[Blösch 2000]}.

De nesten bestaan gangen van 6 tot 12 cm lengte ^{[Peeters et al. 2004]} waarin sequentiële rij van drie ^{[Woydak 1996]} tot zeven broedcellen ^{[Peeters et al. 2004]}^{,[Blösch 2000]}. De broedcellen voor mannetjes zijn met ±7,2mm kleiner in lengte en diameter dan die voor de vrouwtjes met 8,5mm ^{[Blösch 2000],[Danks 1971]}. De diameter van de nestgang varieert tussen 2-5 mm ^{[Woydak 1996],[Tormos et al. 2005]}.

Cellen worden gevuld met 6-31 prooidieren ^{[Peeters et al. 2004]}^{,[Asís et al. 1994],[Woydak 1996]} het maximum ligt rond 30 ^{[Peeters et al. 2004],[Asís et al. 1994]}.

Tussen de broedcellen wordt met modder een dunne scheidingswand gemaakt van 0,2mm ^{[Danks 1971]} waarbij de wanden richting de ingang van het nest dikker worden ^{[Danks 1971]}.

In een nest is vaak een vestibulaire cel aanwezig ^{[Breugel 2014],[Danks 1971],[Asís et al. 2007]}, al dan niet met enkele prooidieren ^{[Danks 1971]}, welke kort kan zijn ^{[Breugel 2014],[Asís et al. 2007]} maar ook kan ontbreken ^{[Breugel 2014],[Danks 1971],[Asís et al. 2007]}. Tussen cellen en dubbele nest pluggen zijn zelden aanwezig ^{[Asís et al. 1994]}.

Ei

Trypoxylon eieren zijn worstvormig ^{[Danks 1971]}. Het ei wordt op één van de laatst toegevoegde spinnen gelegd ^{[Danks 1971]}.

Larve

De geelachtige larve spint een lichtbruine cocon die aan draden dicht achter de voorste afsluitingswand, in het midden of onderaan de cel wordt opgehangen ^{[Blösch 2000]}^{,[Danks 1971]}. Een gedetailleerde beschrijving van de larve wordt gegeven in Asís ^{[Asís et al. 1994]}.

Afhankelijk van de omgevingstemperatuur zal de volwassen wesp na ongeveer een ruime week uitsluipen ^{[Danks 1971]}. Bij de soort is sprake van proterandrie en er sluipen vaak iets meer mannetjes dan vrouwtjes uit ^{[Blösch 2000],[Abraham 1982]}.

2.3. BIJENHOTEL

De soort kan gebruik maken van bijenhotels en kunstmatige nestgelegenheid ^{[Breugel 2014],}^{[Blösch 2000]}^{,[Danks 1971]}.

Ze nestelen in boorgangen van 2,5 – 4 mm ^{[Blösch 2000],[Danks 1971]}.

3. PLANT RELATIES

3.1. HOUTSOORTEN

In de literatuur worden de volgende houtsoorten genoemd als medium waarin de wesp haar nest maakt:

*Adoxaceae* (Muskuskruidfamilie)	Sambucus (Vlier) ^{[Peeters et al. 2004],}^{[Blösch 2000]}
Asteraceae (Composietenfamilie)	Cirsium (Vederdistel) ^{[Danks 1971]}
Onagraceae (Teunisbloemfamilie)	Chamaenerion ^{[Danks 1971]}
*Poaceae* (Grassenfamilie)	Phragmites ^{[Woydak 1996]} – Phragmites australis (Riet) ^{[Peeters et al. 2004]}^,^{[Blösch 2000]}^{,[Asís et al. 1994],[Asís et al. 2007]}^{,[Tormos et al. 2005]}
*Rosaceae* (Rozenfamilie)	Rosa (Roos) ^{[Peeters et al. 2004]} Rubus (Braam) ^{[Peeters et al. 2004],}^{[Blösch 2000]}^{,[Asís et al. 1994],[Woydak 1996],[Danks 1971]}
Scrophulariaceae (Helmkruidfamilie)	Toorts (Verbascum) ^{[Peeters et al. 2004]}
Simaroubaceae (Hemelboomfamilie)	Ailanthus – Ailanthus altissima (Hemelboom) ^{[Asis et al. 1994],[Tormos et al. 2005]}

Tabel 3.1-1: houtsoorten gebruikt als nest substraat

3.2. VOEDSELPLANTEN

In de literatuur worden de volgende planten soorten en groepen genoemd:

Apiaceae
(Schermbloemenfamilie)

Aegopodium ^{[Blösch 2000]}^{,[Woydak 1996]}

Angelica (Engelwortel) ^{[Blösch 2000],[Woydak 1996]}

Heracleum (Bereklauw) ^{[Woydak 1996]}

Pastinaca
– Pastinaca sativa (Pastinaak) ^{[Blösch 2000]}

Tabel 3.2-1: Voedselplanten in Nederland

Naast nectar likken de wespen ook honingdauw ^{[Blösch 2000]}.

4. PROOI RELATIES

De soort gebruikt volwassen ^{[Asís et al. 1994],[Danks 1971]} en onvolwassen ^{[Asís et al. 1994],[Danks 1971]} spinnen (Araneae) ^{[Peeters et al. 2004],}^{[Blösch 2000]} voor haar broed, waarbij het prooispectrum vooral uit web bouwende spinnen bestaat ^{[Danks 1971]}.

In de literatuur worden de volgende in Nederland ^{[Soortenregister]} voorkomende soorten genoemd:

*Araneidae* (Kruisspinachtigen) voorkeurgroep ^{[Asís et al. 1994]}	Araneus – Araneus sturmi (Witruitwielwebspin) ^{[Asis et al. 1994]} Araniella – Araniella cucurbitina (Gewone komkommerspin) ^{[Asís et al. 1994 (onvolwassen)]} Cercidia – Cercidia prominens (Stekelrugje) ^{[Danks 1971]} Hypsosinga – Hypsosinga albovittata (Witvlekpyjamaspin) *^{[Danks 1971 (als}^{Singa albovittata}^)]* – Hypsosinga pygmaea (Graspyjamaspin) ^{[Danks 1971 (}^{als Singa pygmaea}⁾^] Gibbaranea – Gibbaranea bituberculata (Struikknobbelspin) ^{[Asís et al. 1994 (onvolwassen)]}
Linyphiidae ^{[Blösch 2000],[Asís et al. 1994],[Abraham 1982],[Lomholdt 1984]} (Hangmatspinnen) voorkeurgroep ^{[Asís et al. 1994]}	Bolyphantes ^{[Peeters et al. 2004+Woydak 1996+Lomholdt 1984 (als Bolyphaltes)]} Cercidia Cercidia prominens ^{[Danks 1971]} Floronia – Floronia bucculenta ^{[Asís et al. 1994]} Microlinyphia – Microlinyphia pusilla (Kleine heidehangmatspin) ^{[Asís et al. 1994]} Microneta – Microneta viaria ^{[Asís et al. 1994]}
Oxyopidae	Oxyopes – Oxyopes heterophthalmus (Gutspalplynxspin) ^{[Asís et al. 1994]}
Salticidae ^{[Asís et al. 1994]} (Springspinnen)	Pseudeuophrys – Pseudeuophrys erratica ^{[Danks 1971 (als Euophrys erratica)]}
*Tetragnathidae* voorkeurgroep ^{[Asís et al. 1994]}	Pachygnatha ^{[Asís et al. 1994]}
Thomisidae ^{[Asís et al. 1994],[Abraham 1982]} (Krabspinnen)	Synema – Synema globosum (Blinkende krabspin) ^{[Asís et al. 1994 (}^onvolw^assen⁾^] Thomisus –Thomisus onustus (Bloemkrabspin) ^{[Asís et al. 1994 (onvolwassen)]} Xysticus ^{[Asís et al. 1994 (onvolwassen)}^]

Tabel 4-1: Prooisoorten in Nederland

Prooisoorten buiten Nederland:

*Araneidae* (Kruisspinachtigen)	Larinioides – Larinioides sclopetarius ^{[Asís et al. 1994]}
*Theridiidae* (Kogelspinnen)	Kochiura – Kochiura aulica ^{[Asís et al. 1994 (als Anelosimus aulicus)]}

Tabel 4-2: Prooisoorten buiten Nederland

5. PARASITAIRE RELATIES

In de literatuur worden de volgende in Nederland ^{[Soortenregister]} voorkomende soorten genoemd:

Chalcidoidae (Bronswespen)	*Eurytomidae* Eurytoma ^{[Danks 1971]} – Eurytoma nodularis ^, ^[^{Blösch 2000]}^,^{[Peeters et al. 2004}^{+Woydak 1996 (als Eurytoma rubicola)]} Torymus – Torymus armatus ^{[Danks 1971 (als Diomorus armatus)]}
*Chrysididae* (Goudwespen)	Pseudomalus – Pseudomalus auratus ^{[Peeters et al. 2004]}^{,[Asís et al. 1994],[Blösch 2000+Woydak 1996+Lomholdt 1984+Danks 1971 (als omalus auratus)]} – Pseudomalus pusillus ^{[Peeters et al. 2004]}^{,[Blösch 2000+Woydak 1996+Lomholdt 1984 (als omalus pusillus)]} Trichrysis (Drietandgoudwespen) – Trichrysis cyanea ^{[Peeters et al. 2004],[Blösch 2000],[Asís et al. 1994],[Woydak 1996],[Lomholdt 1984],[Danks 1971],[Tormos et al. 2005]}
*Ichneumonidae* (Sluipwespen)	Bathythrix – Bathythrix claviger ^{[Danks 1971 (als Ischnurgops claviger)]} – Bathythrix fragiIis ^{[Danks 1971 (als Ischnurgops fragilis)]} Enclisis – Enclisis macilenta ^{[Blösch 2000 (als Caenocryptus inflatus = Enclisis inflatus)],}^{[Fitton 1982]}^{,[Danks 1971 (als Caenocryptus macilentus)]} Ephialtes – Ephialtes manifestator ^{[Peeters et al. 2004]} Mastrus ^{[Danks 1971]}
*Diptera* (Vliegen)	*Sarcophagidae* (Dambordvliegen) Amobia – Amobia signata ^{[Peeters et al. 2004}^{+Woydak 1996+Lomholdt 1984 (als Pachyophthalmus signatus)],[Povolny 1997]} *Tachinidae* ^{[Danks 1971]}

Tabel 5-1: Parasitaire soortrelaties in Nederland

Parasitaire soorten buiten Nederland:

*Chrysididae* (Goudwespen)	Chrysidea – Chrysis graelsii ^{[Asís et al. 1994 (als Chrysis sybarita)]} – Chrysidea pumila ^{[Asís et al. 1994]}
*Ichneumonidae* (Sluipwespen)	Hoplocryptus – Hoplocryptus coxator ^{[Blösch 2000 (als H. rubi )]}

Tabel 5-2: Parasitaire soortrelaties buiten Nederland

6. HERKENNING

Lengte mannetjes: 7,5 – 10 mm
Lengte vrouwtjes: 9 – 12 mm

Genus

Het genus Trypoxylon is te herkennen aan:

1. Voorvleugel: met één submarginaal cel ^{[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, Trypoxylon: voorvleugel met één submarginaal cel

2. Oog: binnenrand niervormig uitgesneden ^{[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, binnenrand ogen niervormig uitgesneden

3. Achterlijf: achterlijf zwart ^{[Jacobs 2007][Dollfuss 1991]}. Wesp geheel zwart ^{[Klein 1999]}

4. Achterlijf: naar verhouding zeer lang ^{[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}
Het achterlijf steekt relatief ver uit onder de vleugels.

exemplaar voor foto identificatie gevangen op 08-vii-2021, lengte ±12mm

1. Antenne met 12 segmenten ^{[Bitsch 2021],[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, antenne met twaalf segmenten

2. Achterlijf met 6 segmenten ^{[Bitsch 2021],}^{[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, achterlijf met zes segmenten

KOP

1. Afstand tussen ogen op kruin (l1) groter dan afstand tussen ogen ter hoogte clypeus (l2) ^{[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}, verhouding 1,2-1,4 ^{[Bitsch 2021]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, afstand tussen ogen op kruin (l1) groter dan afstand tussen ogen ter hoogte clypeus (l2)

2. Voorhoofd (frons): zonder door lijsten begrensd schildachtig vlak ^{[Bitsch 2021],}^{[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, voorhoofd zonder door lijsten begrensd schildachtig vlak

3. Voorhoofd: midden kiel zwak verhoogd boven antenne implanten, en profil geen duidelijke knik naar voorhoofd lijn ^{[Bitsch 2021],}^{[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, midden kiel zwak verhoogd boven antennen inplanten, en profil geen duidelijke knik naar voorhoofd lijn

4. Clypeus: voorrand midden voorlob zwak uitgetrokken ^{[Bitsch 2021],}^{[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}, met stompe, afgeronde ^{[Klein 1999]}, zijhoeken ^{[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}, lob vrij smal ^{[Bitsch 2021]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, clypeus voorrand midden voorlob zwak uitgetrokken, met stompe zijhoeken

5. Occipitaallijst: onder niet verbreed ^{[Bitsch 2021],[Klein 1999],[Jacobs 2007]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, occipitaal kiel onder niet verbreed

6. Kop: bovenste deel achterhoofd spaarzaam aanliggend behaard ^{[Jacobs 2007]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, bovenste deel achterhoofd spaarzaam aanliggend behaard

BORSTSTUK

1. Bovenzijde borststuk (mesonotum): mat ^{[Bitsch 2021],}^{[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

2. Pronotum: achterrand zwart ^{[Bitsch 2021],}^{[Klein 1999],[Dollfuss 1991]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, achterrand pronotum zwart

3. Voorpoot: scheen (tibia) en tarsen zwart ^{[Bitsch 2021],}^{[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, voorpoot scheen en tarsen zwart

4. Voorvleugel: submarginale cel met rechte of stompe uitwendige hoek ^{[Bitsch 2021]}

*Trypoxylon attenuatum* ♀︎, Voorvleugel: submarginale cel met rechte of stompe uitwendige hoek

ACHTERLIJF

1. Lengte tergum 1 ongeveer zo lang als gecombineerde lengte terga 2 en 3 ^{[Bitsch 2021],[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}, verhouding tussen lengte segment I en achterlijf = 3,0-5,0 ^{[Bitsch 2021]}

Trypoxylon attenuatum ♀︎, lengte tergum 1 ongeveer zo lang als gecombineerde lengte terga 2 en 3

1. Antenne met 13 segmenten ^{[Bitsch 2021],}^{[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, antenne met dertien segmenten

2. Achterlijf met 7 segmenten ^{[Bitsch 2021],}^{[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, achterlijf met zeven segmenten

KOP

1. Kop: Afstand ogen op kruin (l1) ongeveer even groot als de afstand tussen de ogen ter hoogte van clypeus (l2) ^{[Bitsch 2021],[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}, verhouding 1,4-1,7 ^{[Bitsch 2021]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, Afstand ogen op kruin (l1) ongeveer even groot als de afstand tussen de ogen ter hoogte van clypeus (l2)

2. Voorhoofd (frons): zonder door lijsten begrensd schildachtig vlak ^{[Bitsch 2021],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, Voorhoofd (frons): zonder door lijsten begrensd schildachtig vlak

3. Voorhoofd: midden kiel zwak verhoogd boven antenne implanten, en profil geen duidelijke knik naar voorhoofd lijn ^{[Bitsch 2021],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, Voorhoofd: midden kiel zwak verhoogd boven antenne implanten, en profil geen duidelijke knik naar voorhoofd lijn

4. Occipitaallijst: onder niet verbreed ^{[Bitsch 2021],[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, Occipitaallijst: onder niet verbreed

5. Kop: hypostomale brug longitudinaal gestreept ^{[Bitsch 2021]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, Kop: hypostomale brug longitudinaal gestreept

6. Antenne: aan einde nauwelijks verdikt ^{[Dollfuss 1991]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, Antenne: aan einde nauwelijks verdikt

7. Antenne: laatste lid zo lang als de vier voorgaande leden samen ^{[Bitsch 2021],}^{[Dollfuss 1991]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, Antenne: laatste lid zo lang als de vier voorgaande leden samen

BORSTSTUK

1. Borststuk: bovenzijde (mesonotum) mat ^{[Bitsch 2021],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

2. Pronotum: achterrand zwart ^{[Bitsch 2021],[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, Pronotum: achterrand zwart

3. Voorpoot: scheen (tibia) en tarsen zwart ^{[Bitsch 2021],[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, Voorpoot: scheen (tibia) en tarsen zwart

4. Voorvleugel: submarginale cel met rechte of stompe uitwendige hoek ^{[Bitsch 2021]}

ACHTERLIJF

1. Lengte tergum 1 ongeveer zo lang als gecombineerde lengte terga 2 en 3 ^{[Klein 1999],[Jacobs 2007],[Dollfuss 1991]}, soms iets minder ^{[Dollfuss 1991]}, verhouding tussen lengte segment I en achterlijf = 3,0-5,0 ^{[Bitsch 2021]}

2. Genitaal: apicale deel parameren niet dieper gespleten dan haak van aedoeagus ^{[Bitsch 2021],}^{[Jacobs 2007]}, gonostyle slechts over 1/3 van zijn lengte gespleten ^{[Klein 1999]}

*Trypoxylon attenuatum* ♂︎, Genitaal: apicale deel parameren niet dieper gespleten dan haak van aedoeagus; gonostyle (rood) slechts over 1/3 van zijn lengte gespleten

3. Genitaal: basis parameren met lange rechte borstelharen ^{[Jacobs 2007]}

Literatuur

^{Abraham 1982}Abraham, R., 1982. Zur Biologie von Trypoxylon attenuatum Smith, 1851 und T. figulus (Linnaeus, 1758)(Hymenoptera: Sphecidae). Entomologische Mitteilungen aus dem Zoologischen Museum Hamburg.

^{Asís et al. 1994}Asís, J. D., Tormos, J., & Gayubo, S. F., 1994. Biological observations on Trypoxylon attenuatum and description of its mature larva and its natural enemy Trichrysis cyanea (Hymenoptera: Sphecidae, Chrysididae). Journal of the Kansas Entomological Society, 199-207.

^{Asís et al. 2007}Asís, J. D., Benéitez, A., Tormos, J., Gayubo, S. F., & Tomé, M. A. M., 2007. The significance of the vestibular cell in trap nesting wasps (Hymenoptera: Crabronidae): Does its presence reduce mortality?. Journal of insect behavior, 20, 289-305.

^{Bitsch 2021}Bitsch, J., 2021. Hyménoptères sphéciformes d'Europe: Volume 2, Systématique (2e partie) : Crabroninae, Dinetinae, Eremiaspheciinae & Mellininae. France: Faune De France.

^{Blösch 2000}Blösch, M. (2000). Die Grabwespen Deutschlands – Lebens‐weise, Verhalten, Verbreitung. 71. Teil. In Dahl, F.: Die Tierwelt Deutschlands. Begr.: 1925. – Keltern (Goecke & Evers). – 480 S. 341 Farbfotos. ISBN 3‐931374‐26‐2 (hardcover). DM 98,–. Zool. Reihe, 78: 353-353. https://doi.org/10.1002/mmnz.20020780208

^{Breugel 2014}Breugel, P. van., 2014. Gasten van bijenhotels. – EIS Kenniscentrum Insecten en andere ongewervelden & Naturalis Biodiversity Center, Leiden.

^{Danks 1971}Danks, H.V., 1971. Biology of some stem‐nesting aculeate Hymenoptera. Transactions of the Royal Entomological Society of London, 122.11: 323-395.

^{Dollfuss 1991}Dollfuss, H., 1991. Bestimmungsschlüssel der Grabwespen Nord-und Zentraleuropas. Stapfia, 24, 1-247.

^{Fitton 1982}Fitton, M. G., 1982. A catalogue and reclassification of the Ichneumonidae (Hymenoptera) described by CG Thomson.

^{Jacobs 2007}Jacobs, H.J., 2007. Die Grabwespen Deutschlands Ampulicidae. Sphecidae, Crabronidae–Bestimmungsschlüssel in Blank, SM & Taeger, A (Hrsg): Die Tierwelt Deutschlands und der angrenzenden Meeresteile nach ihren Merkmalen und nach ihrer Lebensweise, Hymenoptera III–Keltern, Goecke & Evers, 79: 1-207.

^{Klein 1999}Klein, W., 1996. De graafwespen van de Benelux. Jeugdbondsuitgeverij, 1-130. + Klein, W., 1999 De graafwespen van de Benelux: supplement. Jeugdbondsuitgeverij, 1-37.

^{Lomholdt 1984}Lomholdt, O., 1984. The Sphecidae (Hymenoptera) of Fennoscandia and Denmark. Fauna Entomologica Scandinavica, 4.1: 2.

^{Peeters et al. 2004}Peeters, T.M.J., C. van Achterberg, W.R.B. Heitmans, W.F. Klein, V. Lefeber, A.J. van Loon, A.A. Mabelis, H. Nieuwen-huijsen, M. Reemer, J. de Rond, J. Smit, H.H.W. Velthuis, 2004. De wespen en mieren van Nederland (Hymenoptera: Aculeata). – Nederlandse Fauna 6. Nationaal Natuurhistorisch Museum Naturalis, Leiden, knnv Uitgeverij, Utrecht & European Invertebrate Survey – Nederland, Leiden.

^{Povolny 1997}Povolny, D., 1997. The flesh-flies of Central Europe (Insecta, Diptera, Sarcophagidae). Spixiana Suppl., 24, 1-260.

^{Soortenregister}Nederlands Soortenregister

^{Tormos et al. 2005}Tormos, J., Asís, J. D., Gayubo, S. F., Calvo, J., & Martín, M. A., 2005. Ecology of crabronid wasps found in trap nests from Spain (Hymenoptera: Spheciformes). Florida Entomologist, 88(3), 278-284.

^{Waarneming.nl}Waarneming.nl

^{Woydak 1996}Woydak, H., 1996. Hymenoptera Aculeata Westfalica Familia: Sphecidae (Grabwespen), 3-135.

Bonjour, merci pour votre réaction! Oui M. obscurus et M. aeneus sont très similair. Ce spécimen a vu avec un…

[…] Cette dent pointue que j’observe sur le fémur postérieur m’oriente vers le genre Monodontomerus. Les espèces de ce genre,…

Thank you Tjomme for pointing this out, that is indeed the correct species. I've changed it accordingly. Kind regards, Olger

Hi! Nice website but this is Nomada fabriciana and not sheppardana. Best wishes Tjomme Fernhout

Dank je wel voor de leuke reaktie! Warm is goed, de meeste van mijn hotels staan op zuid en die…

Hartelijk dank voor deze voortreffelijke site. Ik ga onmiddellijk aan de slag om mijn betrekkelijk willekeurig opgehangen beuken schijven in…

kerfdier

Trypoxylon attenuatum♀︎♂︎

INHOUD

1. Verspreiding
2. Gedrag
3. Plant relaties
4. Prooi relaties
5. Parasitaire relaties
6. Herkenning

1. VERSPREIDING

2. GEDRAG

2.1. ACTIVITEIT

2.2. ONTWIKKELING

Nest

Ei

Larve

2.3. BIJENHOTEL

3. PLANT RELATIES

3.1. HOUTSOORTEN

3.2. VOEDSELPLANTEN

4. PROOI RELATIES

5. PARASITAIRE RELATIES

6. HERKENNING

Genus

KOP

BORSTSTUK

ACHTERLIJF

KOP

BORSTSTUK

ACHTERLIJF

Geef een reactie X

Gerelateerde artikelen

INHOUD

1. Verspreiding2. Gedrag3. Plant relaties4. Prooi relaties5. Parasitaire relaties6. Herkenning

1. VERSPREIDING

2. GEDRAG

2.1. ACTIVITEIT

2.2. ONTWIKKELING

Nest

Ei

Larve

2.3. BIJENHOTEL

3. PLANT RELATIES

3.1. HOUTSOORTEN

3.2. VOEDSELPLANTEN

4. PROOI RELATIES

5. PARASITAIRE RELATIES

6. HERKENNING

Genus

KOP

BORSTSTUK

ACHTERLIJF

KOP

BORSTSTUK

ACHTERLIJF

Geef een reactie X

Gerelateerde artikelen

1. Verspreiding
2. Gedrag
3. Plant relaties
4. Prooi relaties
5. Parasitaire relaties
6. Herkenning